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更新时间:2026-01-28
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核心特点: Lipo3000 是阳离子脂质体试剂,其配方中包含专属的 P3000™ 增强剂,能显著提高转染效率,尤其对难转染细胞和DNA转染效果出色。其操作是将脂质体与DNA分别稀释后再混合,简化了流程。

一、标准转染步骤(以24孔板为例)
以下步骤可按比例放大或缩小。
材料准备
- Lipofectamine 3000 试剂
- P3000™ 增强剂(随试剂盒提供)
- 待转染的质粒DNA
- Opti-MEM® 或其它无血清培养基(必须使用,不能用wan全培养基或PBS)
- 状态良好、密度约70-90%的细胞(具体zui-佳密度需根据细胞类型优化)
- 无抗生素的wan全培养基(转染前后更换)
实验前一日:细胞铺板
将细胞接种于24孔板中,使转染时细胞密度达到 70-90% 汇合度。使用正常的wan全培养基。
转染当日(以每孔计算)
A. 溶液配制(使用前轻轻混匀各试剂,切勿涡旋)
1. 稀释质粒DNA溶液:
取一支无菌离心管,加入 50 µL Opti-MEM 培养基。
加入 0.5 - 1.0 µg 质粒DNA(zui-佳用量需优化)。
加入 1 µL P3000™ 增强剂。轻轻吹打或轻弹管壁混匀,室温孵育5分钟(可选,但推荐)。
2. 稀释Lipofectamine 3000试剂:
取另一支无菌离心管,加入 50 µL Opti-MEM 培养基。
加入 1.5 µL Lipofectamine 3000 试剂。立即轻轻吹打或轻弹混匀(脂质体容易沉降)。室温静置 5分钟。
B. 形成脂质体-DNA复合物
将 稀释好的DNA溶液(步骤A1) 全部加入 含有稀释脂质体的管子(步骤A2) 中。
轻轻吹打混匀 或 轻弹管壁混匀。切勿涡旋。
室温静置 10-15分钟,让复合物稳定形成。溶液可能会轻微浑浊,这是正常现象。
C. 将复合物加入细胞
将 100 µL 的脂质体-DNA复合物溶液,逐滴均匀地加入到含细胞的孔中。
轻轻前后左右摇晃培养板,使复合物分布均匀。
将细胞放回37°C,5% CO₂培养箱中继续培养。
D. 换液与检测(时间点需优化)
转染后4-6小时,观察细胞状态。如果脂质体毒性较大,此时应更换为新鲜的wan全培养基(可含抗生素)。
如果细胞状态良好,也可不换液继续培养。
在转染后 24-72小时(取决于实验目的和报告基因)进行蛋白或mRNA水平的检测。
二、关键注意事项与优化建议
1. 细胞状态至关重要:使用低传代、生长旺盛的细胞。转染时细胞必须处于对数生长期。
2. 无血清与无抗生素:配制复合物必须使用 Opti-MEM。转染前后培养基应不含抗生素,以减少细胞毒性和干扰。
3. 试剂轻柔混匀:Lipofectamine 3000 和形成的复合物都不能涡旋,剧烈操作会破坏脂质体结构。
4. DNA纯度要求高:使用内毒素低、纯度高的质粒(OD260/280 ≈ 1.8-2.0)。
5. 比例优化:shou ci实验必须进行剂量优化。优化两个变量:
DNA用量:通常在0.25 µg - 1.5 µg/孔(24孔板)之间测试。
Lipofectamine 3000 用量:与DNA的比例(µL : µg)通常在 1:1 到 3:1 之间测试(例如,0.5 µg DNA 搭配 0.5 µL, 1.0 µL, 1.5 µL试剂)。
6. P3000™增强剂:其用量与DNA量成正比(通常为 2 µL/µg DNA),但也可以微调。
7. 阴性对照:务必设置只加脂质体复合物(不含DNA)的对照组,以评估脂质体本身的细胞毒性。
8. 复合物孵育时间:10-15分钟足够,过长(如>30分钟)可能降低效率。
三、简明步骤总结
1. 铺板:细胞达70-90%汇合。
2. 配液A:Opti-MEM + DNA + P3000,混匀。
3. 配液B:Opti-MEM + Lipo3000,混匀,静置5分钟。
4. 混合:将A加入B,混匀,室温静置10-15分钟。
5. 加样:将复合物逐滴加入细胞,轻柔混匀。
6. 培养:4-6小时后换液(视情况),继续培养24-72小时检测。

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