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抗体使用避坑指南

更新时间:2025-11-07点击次数:16
  抗体是生命科学实验的“基石”,但也是最容易出问题的环节之一。踩中一个“雷区”,就可能导致几个月的心血白费。以下为您梳理了抗体使用过程中最常见的“雷区”及避坑指南,涵盖了从存储到验证的全流程。
 
  一、抗体使用雷区一:存储不当——“生死攸关的第一步”
 
  错误做法:
 
  将浓缩抗体长期存放在4°C(非“即用型”抗体)。
 
  反复冻融抗体。
 
  将分装抗体存放在冰箱门架上,温度波动剧烈。
 
  避坑指南:
 
  遵循说明书!绝大多数浓缩抗体必须-20°C长期保存。

 


 
  坚决分装!根据使用频率,将抗体无菌分装成小份(如5-10μL/管),避免反复冻融。
 
  使用抗体存储盒:将分装管放入装有异丙醇的-20°C专用抗体存储盒中,确保温度稳定,避免冰晶形成。
 
  工作液的保存:稀释后的抗体工作液通常不稳定,应现用现配,或在4°C短期保存(1-2周),并加入防腐剂(如0.02%叠氮化钠,注意:有毒且会抑制某些酶活性)。
 
  二、抗体使用雷区二:实验设计与优化不足——“盲目上阵,必败无疑”
 
  错误做法:
 
  直接使用说明书推荐的稀释度,不进行梯度预实验。
 
  不设置或设置错误的阳性/阴性对照。
 
  不同实验类型(WB/IHC/IF/FC)使用相同的稀释度。
 
  避坑指南:
 
  必须进行抗体滴定!这是最重要的优化步骤。在您的实验系统下,做一个梯度稀释(如1:100,1:500,1:1000,1:2000),找到信噪比最高的最佳稀释度。
 
  设立严谨的对照:
 
  阳性对照:已知表达目标蛋白的细胞系或组织。验证实验体系有效。
 
  阴性对照:
 
  实验阴性对照(至关重要!):使用同型IgG或不含一抗的缓冲液。这是判断信号特异性的金标准。
 
  生物学阴性对照:已知不表达目标蛋白的细胞系或组织(如基因敲除细胞)。
 
  明确应用类型:务必确认抗体适用于您要做的实验(WB,IHC,IF,FC等)。用于WB的抗体可能不适用于IHC,反之亦然。
 
  三、抗体使用雷区三:操作与流程不规范——“细节决定成败”
 
  错误做法:
 
  WB转膜不彻底或过转。
 
  IHC/IF中抗原修复方法或条件错误。
 
  封闭不充分或封闭过度。
 
  洗脱不充分或过于剧烈。
 
  避坑指南:
 
  WB:
 
  验证转膜效率:使用可逆的染液(如丽春红S)或考马斯亮蓝染凝胶,确认蛋白已转至膜上。
 
  优化封闭:常用5%BSA或脱脂牛奶,注意磷酸化蛋白检测需用BSA,因为牛奶中含有酪蛋白磷酸化。
 
  IHC/IF:
 
  优化抗原修复:根据目标抗原选择柠檬酸盐(pH6.0)或EDTA(pH8.0-9.0)缓冲液,并优化加热时间/压力。
 
  防止切片干燥:任何时候都不要让组织切片干燥,否则会导致非特异性背景极高。
 
  充分洗涤:使用足够的PBST或TBST,每次洗涤5分钟,洗3次,彻底去除未结合的抗体。
 
  四、抗体使用雷区四:抗体本身的质量与选择--“选择大于努力”
 
  选择可靠品牌: 优先选择CST, Abcam, Thermo Fisher等口碑好的品牌。
 
  查阅数据: 购买前,务必在上查看该抗体的应用数据(WB、IHC等图片)和参考文献。
 
  利用引用文献: 在PubMed上搜索该抗体的货号,查看其他同行在高质量期刊中是如何使用和验证该抗体的。

 


 
  遵循以上指南,您可以极大地避免踩雷,确保实验结果的可靠性、可重复性和科学性。祝您实验顺利!
 
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